中文名 | Tritoqualine |
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英文名 | 7-amino-4,5,6-triethoxy-3-(4-methoxy-6-methyl-7,8-dihydro-5H-[1,3]dioxolo[4,5-g]isoquinolin-5-yl)-3H-2-benzofuran-1-one |
英文别名 |
Tritocualina
Tritocaline tritoqualine Livalfa Hypostamin Hypostamine MCI-5011 Inhibostamin |
描述 | Tritoqualine 是一种组氨酸脱羧酶抑制剂。 |
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相关类别 | |
靶点 |
histidine decarboxylase[1] |
体外研究 | 通过用Tritoqualine(200mg/kg /天,po,7天)预处理大鼠来研究Tritoqualine(TRQ)对CCl4诱导的酶渗漏的影响。 Tritoqualine预处理大鼠细胞的乳酸脱氢酶(LDH)释放比例明显低于对照大鼠。加入7.8mM CCl4后,丙二醛(MDA)产生速率加快。 Tritoqualine以剂量依赖的方式降低其速率,并且它在33μM的浓度下完全阻止CCl4刺激的脂质过氧化[2]。 |
体内研究 | 单次施用CCl4(0.75mL/kg,po)导致肝脏中体内脂质过氧化增加五倍。相反,在CCl4处理之前通过Tritoqualine(100mg/kg)预处理14天获得脂质过氧化降低37%。维生素E(25 mg/kg)预处理大鼠的体重减少63%[2]。 |
激酶实验 | Tritoqualine(TRQ)悬浮在0.2%吐温80溶液中[2]。使用重约150g的雄性Wistar大鼠。每天给予大鼠(200mg / kg,口服)Tritoqualine(TRQ)7天。通过改良的Seglen方法从灌注的肝脏中分离肝细胞。简而言之,用150mL含有0.5mM EGTA的10mM HEPES缓冲的不含Ca 2+的Hanks'溶液(pH 7.4)开始肝脏灌注。 5分钟后,切除肝脏,并将灌注液更换为100mL含有5mM CaCl 2,0.05%胶原酶和0.005%大豆胰蛋白酶抑制剂代替EGTA的再循环HEPES缓冲的Hanks'溶液(pH 7.4)。该过程在37℃下持续15-20分钟,同时通过碳水化合物(95%O 2,5%CO 2),直至肝脏开始明显崩解。将细胞分散在HEPES缓冲的Hanks'溶液(pH7.4)中,通过尼龙长袜过滤,并通过三次离心以50xg离心1分钟进行沉淀。最后,将肝细胞以5×10 5个细胞/ mL悬浮于补充有2%BSA的相同溶液中。将2mL细胞悬浮液置于35mm直径的培养皿上,并在37℃的培养箱中孵育。用乙醇(10%,v / v)稀释CCl4,并以2.6或5.2mM(分别为0.25或0.5%,v / v)的浓度加入培养皿中。作为细胞膜损伤的标志物,使用离心样品的上清液测定从细胞中泄漏的乳酸脱氢酶(LDH)。在通过超声处理裂解细胞后测量总LDH活性。结果表示为CCl4诱导的LDH释放与细胞中总LDH的比例[2]。 |
动物实验 | 将大鼠[2] Tritoqualine(TRQ)给予每天重约200g的大鼠14天。向其他大鼠给予相同量的0.2%吐温80溶液。在最后一次施用这些化合物后4小时,向大鼠(0.75mL / kg,腹膜内)给予用橄榄油(37.5%,v / v)稀释的CCl4。在注射CCl4后20小时杀死动物。血清来自动脉血。用1.15%KCl溶液通过门静脉洗涤肝脏,切下并在10倍体积的相同溶液中匀浆。通过1%磷酸法定量肝匀浆中的脂质过氧化。所有操作都在冰上快速完成,以避免进一步的过氧化。使用商业测试试剂盒测量血清中的谷氨酸草酰乙酸转氨酶(GOT)和谷氨酸丙酮酸转氨酶(GPT)。 |
参考文献 |
密度 | 1.296g/cm3 |
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沸点 | 647.2ºC at 760mmHg |
分子式 | C26H32N2O8 |
分子量 | 500.54100 |
闪点 | 345.2ºC |
精确质量 | 500.21600 |
PSA | 110.94000 |
LogP | 4.16200 |
蒸汽压 | 1.22E-16mmHg at 25°C |
折射率 | 1.595 |
储存条件 | 2-8℃ |